酵母発酵の実験では、酵母が糖を分解するときに生じる二酸化炭素やエタノールを指標として、発酵の進み方を調べます。酵母は酸素が少ない条件で糖を利用すると、主にエタノールと二酸化炭素を生成します。この反応はアルコール発酵と呼ばれ、パン、酒類、発酵食品の製造にも利用されています。
発酵速度は、糖の種類と濃度、温度、pH、酵母量、反応時間などによって変化します。学校や大学の実験では、発生した気体の体積、容器の質量減少、気泡数、液面変化などを測定し、条件ごとの違いを比較します。
この記事では、パン酵母を用いた教育実験を想定し、導入、注意書き、結果項目、参考実験値、計算、誤差原因、結果文、考察例の順にまとめます。
注意:
この記事は、生物実験レポートを作成するための学習用参考資料です。掲載している数値は説明用の参考例であり、実際の測定結果ではありません。
実験には市販のパン酵母など、食品用途または教育用途として安全性が確認された酵母を使用してください。由来不明の微生物を培養したり、実験後の液体を飲食したりしないでください。
発酵中は二酸化炭素が発生するため、密閉容器内で反応させると圧力が上昇する危険があります。完全密閉を避け、学校や施設の実験手順に従ってください。
ガラス器具や温水を使用する場合は、破損ややけどに注意してください。実験後の試料や器具は、担当教員や施設の指示に従って処理・洗浄してください。
発酵によってエタノールが生じる場合がありますが、実験生成物は飲用できません。
酵母発酵の基本
アルコール発酵
酵母は、酸素が少ない条件でグルコースなどの糖を分解し、エタノールと二酸化炭素を生成します。代表的な反応は次のように表されます。
C6H12O6 → 2C2H5OH + 2CO2
発酵速度に影響する条件
発酵速度には、糖の種類、糖濃度、温度、pH、酵母量、反応時間などが影響します。温度が低すぎると酵素反応が遅くなり、高すぎると酵母の酵素や細胞が損傷するため、発酵速度は低下します。
二酸化炭素を測定する理由
アルコール発酵では、グルコース1 molから二酸化炭素2 molが生じます。そのため、発生した二酸化炭素の体積や質量を測定すると、発酵の進行程度を間接的に評価できます。
結果に記録する主な項目
- 使用した酵母の種類
- 酵母量
- 糖の種類
- 糖濃度
- 試料液量
- 温度
- pH
- 反応時間
- 測定間隔
- 発生した二酸化炭素の体積
- 単位時間当たりの二酸化炭素発生量
- 容器の質量減少量
- 気泡数
- 泡の高さ
- 液面変化
- 反応開始までの時間
- 最大発酵速度
- 平均発酵速度
- 対照区との差
- 増加率・低下率
- 発生した二酸化炭素の物質量
- 消費されたグルコースの推定量
- 生成したエタノールの推定量
- 理論値に対する収率
- 反復測定の平均値
- 標準偏差
- 変動係数
参考実験条件
| 項目 | 参考条件 |
|---|---|
| 酵母 | 市販の乾燥パン酵母 |
| 酵母量 | 0.50 g |
| 糖液量 | 20.0 mL |
| 糖濃度 | 5.0% |
| 反応時間 | 30分 |
| 測定間隔 | 5分 |
| 比較条件 | 糖の種類、温度、糖濃度 |
| 対照区 | 糖を含まない酵母懸濁液 |
| 反復数 | 各条件3回 |
参考実験値
時間経過と二酸化炭素発生量
| 反応時間(分) | 累積CO2体積(mL) | 5分間の増加量(mL) |
|---|---|---|
| 0 | 0.0 | ― |
| 5 | 3.2 | 3.2 |
| 10 | 8.1 | 4.9 |
| 15 | 14.7 | 6.6 |
| 20 | 21.2 | 6.5 |
| 25 | 26.5 | 5.3 |
| 30 | 30.1 | 3.6 |
糖の種類による比較
| 糖の種類 | 30分後のCO2体積(mL) | 平均発酵速度(mL/分) | 観察結果 |
|---|---|---|---|
| グルコース | 30.1 | 1.00 | 活発に発酵 |
| スクロース | 26.4 | 0.88 | 発酵あり |
| フルクトース | 28.7 | 0.96 | 活発に発酵 |
| ラクトース | 1.8 | 0.06 | ほとんど発酵しない |
| 糖なし | 0.9 | 0.03 | 対照区 |
温度による比較
| 温度(℃) | 30分後のCO2体積(mL) | グルコース条件に対する割合(%) |
|---|---|---|
| 10 | 7.2 | 23.9 |
| 20 | 19.5 | 64.8 |
| 30 | 30.1 | 100.0 |
| 40 | 23.6 | 78.4 |
| 50 | 2.4 | 8.0 |
糖濃度による比較
| グルコース濃度(%) | 30分後のCO2体積(mL) | 平均発酵速度(mL/分) |
|---|---|---|
| 0 | 0.9 | 0.03 |
| 1 | 10.4 | 0.35 |
| 3 | 23.7 | 0.79 |
| 5 | 30.1 | 1.00 |
| 10 | 27.8 | 0.93 |
| 20 | 16.2 | 0.54 |
反復測定の参考値
| 試行 | 30分後のCO2体積(mL) | 平均との差(mL) |
|---|---|---|
| 1 | 29.4 | -0.7 |
| 2 | 30.1 | 0.0 |
| 3 | 30.8 | +0.7 |
| 平均 | 30.1 | ― |
質量減少による測定例
| 反応時間(分) | 容器全体の質量(g) | 開始時からの減少量(g) |
|---|---|---|
| 0 | 85.432 | 0.000 |
| 10 | 85.419 | 0.013 |
| 20 | 85.397 | 0.035 |
| 30 | 85.378 | 0.054 |
計算方法
平均発酵速度
30分間に30.1 mLの二酸化炭素が発生した場合は、次のようになります。
平均発酵速度 = 二酸化炭素発生量 ÷ 反応時間
= 30.1 ÷ 30
≈ 1.00 mL/分
区間ごとの発酵速度
10分から15分の間に、二酸化炭素量が8.1 mLから14.7 mLへ増えた場合は、次のようになります。
区間発酵速度 = (14.7 − 8.1) ÷ (15 − 10)
= 6.6 ÷ 5
= 1.32 mL/分
対照区を差し引いた正味発生量
グルコース条件30.1 mL、糖なし条件0.9 mLの場合は、次のようになります。
正味CO2発生量 = 試料区 − 対照区
= 30.1 − 0.9
= 29.2 mL
条件間の増加率
20℃で19.5 mL、30℃で30.1 mLの場合は、次のようになります。
増加率(%) = (30℃の値 − 20℃の値) ÷ 20℃の値 × 100
= (30.1 − 19.5) ÷ 19.5 × 100
≈ 54.4%
二酸化炭素の物質量
30.1 mLの二酸化炭素が、室温付近で1 mol = 24.0 Lとして扱える場合は、次のようになります。
CO2の物質量 = 0.0301 L ÷ 24.0 L/mol
≈ 1.25 × 10-3 mol
消費されたグルコース量の推定
グルコース1 molから二酸化炭素2 molが生じるため、消費されたグルコースは次のように推定できます。
グルコースの物質量 = CO2の物質量 ÷ 2
= 1.25 × 10-3 ÷ 2
≈ 6.27 × 10-4 mol
グルコースのモル質量を180 g/molとすると、質量は次のようになります。
グルコース質量 = 6.27 × 10-4 × 180
≈ 0.113 g
エタノール生成量の推定
反応式では、グルコース1 molからエタノール2 molが生成します。二酸化炭素とエタノールの物質量比も1:1であるため、エタノールの物質量は約1.25 × 10-3 molと推定できます。
エタノール質量 = 1.25 × 10-3 × 46.0
≈ 0.0575 g
理論収率
理論上40.0 mLの二酸化炭素が発生すると予想され、実測値が30.1 mLの場合は、次のようになります。
収率(%) = 実測値 ÷ 理論値 × 100
= 30.1 ÷ 40.0 × 100
= 75.3%
標準偏差
29.4、30.1、30.8 mLの標準偏差は、次の式で求めます。
s = √{Σ(xi − x̄)2/(n − 1)}
= 0.70 mL
変動係数
変動係数(%) = 標準偏差 ÷ 平均値 × 100
= 0.70 ÷ 30.1 × 100
≈ 2.3%
主な誤差原因
| 誤差原因 | 結果への影響 | 改善方法 |
|---|---|---|
| 酵母量の違い | 発酵に関与する細胞数が変わる | 同じ質量または濃度にそろえる |
| 糖濃度の調製誤差 | 基質量や浸透圧が変わる | 液量と質量を正確に測定する |
| 溶解不足 | 糖濃度が均一にならない | 反応前に十分混合する |
| 温度のばらつき | 酵素反応速度が変化する | 恒温条件を保つ |
| 試料を温度へ慣らしていない | 反応開始時の温度が条件と異なる | 測定前に条件温度へそろえる |
| 反応開始時刻のずれ | 反応時間が試料ごとに異なる | 添加順と計時方法を統一する |
| 気体の漏れ | 二酸化炭素発生量を過小評価する | 接続部を確認する |
| 装置内に残った空気 | 初期体積に空気が含まれる | 初期値を記録し補正する |
| 二酸化炭素の水への溶解 | 気体として回収される量が減る | 同一条件で比較し限界を記載する |
| 気泡の付着 | 気体が測定部へ移動しない | 装置を乱暴に動かさず状態を確認する |
| 目盛りの読み取り誤差 | 体積値が高い・低い方向へずれる | 目線を液面と水平にする |
| 泡を気体体積として読んだ | 発生量を過大評価する | 気体部分と泡を区別する |
| 混合の強さの違い | 酵母と糖の接触状態が変わる | 混合方法を統一する |
| 酵母の保存状態 | 生存率や活性が変わる | 同一製品・同一保存条件を用いる |
| 酵母の再水和不足 | 反応開始が遅れる | 実験手順に従って準備する |
| pHの違い | 酵素活性や細胞機能が変わる | 同じ緩衝条件を用いる |
| 高糖濃度による浸透圧 | 酵母の水分状態が変わり発酵が抑制される | 広い濃度範囲を比較する |
| 酸素条件の違い | 呼吸と発酵の割合が変わる | 容器条件を統一する |
| 二酸化炭素以外の質量変化 | 質量減少法で誤差が生じる | 蒸発量を対照区で補正する |
| 水分の蒸発 | 質量減少を過大評価する | 同条件の対照区を設ける |
| 反復数が少ない | 偶然誤差の影響が大きい | 複数回測定し平均を求める |
| 試料ラベルの取り違え | 糖や温度条件との対応が崩れる | 反応前に明確に表示する |
結果文の例
市販の乾燥パン酵母0.50 gと5.0%グルコース溶液20.0 mLを用い、30分間の二酸化炭素発生量を5分ごとに測定した。
二酸化炭素の累積体積は、5分後3.2 mL、10分後8.1 mL、15分後14.7 mL、20分後21.2 mL、25分後26.5 mL、30分後30.1 mLとなった。30分間の平均発酵速度は1.00 mL/分であった。
10分から15分の区間では6.6 mL増加し、区間発酵速度は1.32 mL/分であった。25分から30分の区間では3.6 mL増加し、区間発酵速度は0.72 mL/分であった。
糖の種類を比較すると、30分後の二酸化炭素発生量は、グルコース30.1 mL、フルクトース28.7 mL、スクロース26.4 mL、ラクトース1.8 mL、糖なし0.9 mLであった。
温度条件では、30℃で30.1 mLと最も多く、10℃では7.2 mL、50℃では2.4 mLであった。
グルコース濃度では、5%条件で30.1 mLと最も多く、20%条件では16.2 mLへ低下した。
考察例
本実験では、パン酵母によるアルコール発酵を、発生した二酸化炭素の体積を指標として調べた。
グルコース条件では、反応時間の経過とともに二酸化炭素量が増加し、30分後には30.1 mLとなった。このことから、酵母がグルコースを分解してアルコール発酵を行ったと考えられる。
アルコール発酵では、グルコース1分子からエタノール2分子と二酸化炭素2分子が生成する。そのため、二酸化炭素発生量の増加は、発酵反応が進行したことを示す。
発酵速度は反応開始直後から一定ではなかった。0分から5分までの増加量は3.2 mLであったが、10分から15分では6.6 mLまで増加した。
反応初期の発酵速度が低かった原因として、乾燥酵母が水分を吸収して代謝を再開するまでに時間が必要であったこと、酵母と糖液の温度が反応条件へ安定するまでに時間がかかったことなどが考えられる。
10分から20分付近では区間発酵速度が高く、酵母細胞の代謝が活発であったと考えられる。一方、25分以降は二酸化炭素の増加量が小さくなった。
後半に発酵速度が低下した原因として、利用可能な糖の減少、エタノールや代謝産物の蓄積、pHの変化、二酸化炭素の蓄積などが考えられる。
糖の種類を比較すると、グルコース、フルクトース、スクロースでは明確な二酸化炭素発生が見られたが、ラクトースでは糖なし条件との差が小さかった。
グルコースとフルクトースは単糖であり、酵母が比較的直接利用できる。一方、スクロースは二糖であるが、酵母が持つ酵素によって単糖へ分解された後に発酵へ利用されたため、二酸化炭素が発生したと考えられる。
ラクトース条件で発酵がほとんど進まなかったのは、一般的なパン酵母がラクトースを効率よく分解・利用するための酵素系を持たないためと考えられる。
糖なし条件でも0.9 mLの気体増加が見られた。これは、装置内の空気の膨張、測定誤差、酵母細胞内に残っていた少量の貯蔵物質の利用などによる可能性がある。
したがって、各糖条件の発酵量を評価する場合は、糖なし条件の値を差し引いた正味の二酸化炭素発生量を用いると、糖に由来する発酵をより適切に比較できる。
温度条件では、30℃で二酸化炭素発生量が最も多かった。温度が上昇すると分子運動と酵素反応速度が高まり、一定範囲では発酵速度が増加するためと考えられる。
10℃では二酸化炭素発生量が少なかった。低温では酵母細胞内の酵素反応や膜輸送が遅くなり、糖の取り込みと代謝速度が低下したと考えられる。
40℃では30℃より発酵量が減少し、50℃ではほとんど発酵が見られなかった。高温では酵母の酵素や細胞膜が損傷し、代謝機能や生存率が低下した可能性がある。
この結果から、温度を上げれば発酵速度が常に増加するわけではなく、酵母が活発に働く適温範囲が存在すると考えられる。
グルコース濃度の比較では、0%から5%までは濃度の上昇とともに二酸化炭素発生量が増加した。これは、酵母が利用できる基質量が増えたためと考えられる。
しかし、10%では5%よりわずかに低下し、20%では大きく低下した。高濃度の糖液では浸透圧が高くなり、酵母細胞から水分が失われやすくなるため、細胞活動が抑制された可能性がある。
したがって、発酵速度は糖濃度に単純比例するのではなく、基質不足と浸透圧阻害の両方によって決まると考えられる。
30.1 mLの二酸化炭素を24.0 L/molとして換算すると、約1.25 × 10-3 molとなった。反応式から、消費されたグルコースは約6.27 × 10-4 mol、約0.113 gと推定された。
ただし、この計算は発生した二酸化炭素がすべて回収されたことを前提としている。実際には、一部の二酸化炭素が反応液へ溶解したり、装置の接続部から漏れたりする可能性がある。
また、酵母が取り込んだ糖のすべてがアルコール発酵に使われるわけではない。一部は細胞の維持、増殖、他の代謝物の合成にも利用されるため、二酸化炭素から求めたグルコース消費量は近似値である。
理論値40.0 mLに対する実測収率は75.3%であった。収率が100%未満になった原因として、気体漏れ、二酸化炭素の溶解、反応時間不足、酵母活性のばらつき、糖の一部が発酵以外の代謝に利用されたことなどが考えられる。
反復測定では、29.4、30.1、30.8 mLとなり、平均30.1 mL、標準偏差0.70 mL、変動係数2.3%であった。ばらつきが比較的小さかったことから、同一条件下で一定の再現性が得られたと考えられる。
主な誤差原因として、酵母量、糖濃度、反応開始時刻、温度、混合状態、気体漏れ、目盛りの読み取り、二酸化炭素の水への溶解などが挙げられる。
特に温度は発酵速度へ大きく影響するため、試料ごとに温度が異なると、糖の種類や濃度による差と区別できなくなる。そのため、試料を測定温度へ十分になじませ、反応中も同じ温度を保つ必要がある。
また、試料を順番に調製すると、最初と最後の試料で反応開始時刻が異なる。試料数が多い場合は、添加時刻を記録し、それぞれの反応時間を正確に管理する必要がある。
以上より、酵母による発酵速度は、糖の種類、糖濃度、温度、反応時間によって変化することが分かった。酵母が利用しやすい糖と適切な温度・濃度条件では二酸化炭素発生量が増加し、低温、高温、高糖濃度などの条件では発酵が抑制された。
二酸化炭素がほとんど発生しなかった場合の考察例
二酸化炭素がほとんど発生しなかった原因として、酵母の活性が低下していたこと、糖が酵母に利用できない種類であったこと、温度が低すぎるまたは高すぎること、糖を加え忘れたこと、反応時間が短かったことなどが考えられる。
糖なし条件でも気体が増えた場合の考察例
糖なし条件で気体量が増加した原因として、装置内の空気の温度膨張、気泡の移動、目盛りの読み取り誤差、酵母細胞内に残っていた貯蔵物質の利用などが考えられる。試料区から対照区の値を差し引いて評価する必要がある。
高糖濃度ほど発酵量が低下した場合の考察例
高糖濃度条件で発酵量が低下した原因として、高い浸透圧によって酵母細胞の水分状態が変化し、糖の取り込みや酵素反応が抑制された可能性がある。基質が多いことと発酵速度が高いことは必ずしも一致しない。
反復測定のばらつきが大きかった場合の考察例
反復間のばらつきが大きかった原因として、酵母量、糖濃度、混合状態、反応開始時刻、温度、装置の気密性などが統一されていなかった可能性がある。複数回測定し、平均値、標準偏差、変動係数を用いて再現性を評価する必要がある。
時間とともに発酵速度が上昇し続けた場合の考察例
測定終了時まで発酵速度が上昇し続けた場合、測定時間内では酵母がまだ活発な増殖・発酵段階にあり、糖の不足や生成物による阻害が十分に生じていなかった可能性がある。測定時間を延長すると、速度低下が観察される場合がある。
まとめ
酵母は糖を分解し、酸素が少ない条件ではエタノールと二酸化炭素を生成します。
発生した二酸化炭素の体積や質量減少を測定すると、発酵速度を間接的に評価できます。
発酵速度は、糖の種類、糖濃度、温度、pH、酵母量、反応時間などによって変化します。
糖濃度や温度を高くすれば常に発酵速度が上がるわけではなく、酵母が活発に働く適切な範囲があります。
正確に比較するには、酵母量、糖液量、温度、反応開始時刻、気体回収条件を統一し、対照区と複数回の測定を設けることが重要です。
